qPCR-Effizienz-Rechner
Geben Sie die Steigung Ihrer qPCR-Standardkurve ein (Ct oder Cq gegen log10 der Ausgangsmenge aufgetragen), um die geschätzte Amplifikationseffizienz zu berechnen. Dies ist eine Berechnung aus der von Ihnen angegebenen Steigung, keine Validierung Ihres Assays.
Zuletzt aktualisiert: September 25, 2026
Häufig gestellte Fragen
Welche Steigung ergibt 100 % Effizienz?
Eine Steigung von genau -3,32 (genauer: -1/log10(2)) entspricht 100 % Effizienz, das heißt, die Produktmenge verdoppelt sich bei jedem Zyklus.
Warum ist eine gültige Steigung negativ?
Bei einer typischen qPCR-Standardkurve sinken die Ct- (oder Cq-)Werte, wenn die Ausgangs-Templatemenge steigt, daher ist die Steigung normalerweise negativ. Dieser Rechner markiert eine positive Steigung als unwahrscheinlich für eine gültige Standardkurve.
Welcher Effizienzbereich gilt als akzeptabel?
Verschiedene Labore und Assay-Typen wenden unterschiedliche akzeptable Bereiche an, abhängig von Reaktionschemie und Anforderungen. Dieser Rechner legt keinen Bestanden/Nicht-bestanden-Schwellenwert fest; interpretieren Sie das Ergebnis anhand der Validierungskriterien Ihres eigenen Assays.
Was kann eine Effizienz weit von 100 % verursachen?
Häufige Ursachen sind Pipettier- oder Verdünnungsfehler in der Standardkurve, mitgeschleppte PCR-Inhibitoren im Template, suboptimales Primerdesign oder -konzentration und Sekundärstruktur des Amplikons. Die Fehlersuche hängt von Ihrem spezifischen Assay ab.
Wie unterscheidet sich das vom Anlagerungstemperatur-Rechner?
Der Anlagerungstemperatur-Rechner schätzt einen PCR-Zyklusparameter aus den Primer-Schmelztemperaturen, bevor Sie Daten generieren. Dieses Tool analysiert die Steigung aus einem bereits abgeschlossenen Standardkurvenlauf.
Ersetzt das Labor-QC-Verfahren?
Nein. Es führt eine spezifische Berechnung aus einer von Ihnen angegebenen Steigung durch. Eine ordnungsgemäße Assay-Validierung umfasst Replikate, Kontrollen und Kriterien, die für Ihr Labor und Ihre Anwendung spezifisch sind.